Control de Cactoblastis
cactorum
Introducción
Conocida popularmente como “polilla de la tuna” o “gusano de la tuna”, el Cactoblastis cactorum es la plaga más importante de los cultivos de tuna
(Opuntia ficus-indica). Se han reportado graves daños ocasionados por su ataque en todo el país y particularmente en la Provincia de Córdoba, Argentina.
Incluso las infecciones poco graves limitan el crecimiento de las plantas y dificultan el establecimiento exitoso de nuevas plantas en sitios cercanos. En casos muy graves puede provocar hasta la destrucción total de la planta, aunque normalmente sólo las plantas con menos de 9 cladodios son más susceptibles a la mortalidad.
El adulto de esta plaga es una mariposa de hábitos nocturnos de color pardo grisáceo que mide 3 cm con las alas extendidas. El período de vida de esta mariposa es de 1 a 2 semanas durante el cual puede efectuar varias
oviposturas.
Al parecer, en el mecanismo por el cual la mariposa selecciona la planta para
oviponer, interviene el grado de asimilación de CO2 (Stange et al. 1993). Se ha observado que la mariposa no prefiere las plantas con mayor actividad fotosintética (mayor asimilación de CO2) sino las plantas situadas cerca de otras previamente atacadas.
Entonces, esta distribución contagiosa de huevos estaría causada por el cruzamiento de larvas sobre algunas plantas
(Myers et al. 1981) y la preferencia de la mariposa por estas plantas enfermas, con menor asimilación de CO2 (esto podría explicar la resistencia al ataque de Cactoblastis cactorum observada en Opuntias sometidas a condiciones de stress hídrico o de nutrientes ; White 1981). Se ha observado también la preferencia de oviponer en los lugares de la planta mas protegidos del viento.
La estructura de la ovipostura asemeja la forma de una espina con un ligero curvamiento orientado hacia el suelo y está compuesta de entre 60 y 140 huevos apilados (o más).
El momento de mayor actividad del Cactoblastis cactorum ocurre en la primavera y el verano. La ovipostura se realiza en dos momentos del año (dos generaciones), para Córdoba la primera ocurre desde la última semana de Agosto hasta Noviembre, y la segunda desde Febrero hasta Marzo. El tiempo de incubación está relacionado con la temperatura, observándose diferencias entre cada ovipostura según las condiciones climáticas. En general, la primera generación tiene un tiempo de incubación mayor que la segunda, encontrándose que pueden variar desde 50 hasta 10 días (con temperaturas óptimas, mayores a 25°C).
De los huevos nacen larvas de 1,5 mm de largo, blancas, que comienzan a minar la cutícula para entrar al interior de la planta. Esta etapa puede extenderse por dos días, aunque se ha reportado que pueden permanecen fuera de la planta hasta 10-15 días.
Una vez dentro de los cladodios, las larvas se alimentan de sus tejidos y crecen hasta alcanzar su madurez (25-30 mm), saliendo de su interior sólo cuando comienza a escasear el suministro de alimento. Se ha observado que se desplazan varios metros en busca de otra planta. Dentro de los cladodios infectados las larvas tienen comportamiento gregario y, en estado maduro, se caracterizan por su color anaranjado, interrumpido transversalmente por nítidas bandas oscuras.
Las larvas permanecen dentro de los cladodios por casi dos meses en el verano y por cuatro meses en el invierno, encontrándose durante este período, en diferentes estadíos larvales.
Luego salen de los cladodios y pupan en capullos formados en el suelo, abajo de paletas caídas, escondidas en rendijas sobre la parte más baja de la planta u otros nichos protegidos (ocasionalmente en los cladodios).
Historia
El Cactoblastis cactorum aparece en los libros de ecología como exitoso ejemplo de control biológico de especies de Opuntias plaga. Es por esto que es mucho mas fácil encontrar publicaciones que hablen de este Lepidóptero como insecto útil, que como una plaga.
Si bien esta mariposa es originaria de Argentina, Uruguay y Paraguay, fue introducida como control biológico de Opuntias asilvestradas en Australia, Sud África, Hawai y La India.
Debido a las exitosas experiencias obtenidas en otros continentes, en el año 1957 fue introducida también en islas del Caribe para control de varias especies de Opuntias. La polilla, a partir de entonces, fue extendiendo su distribución debido a traslados intencionales y por dispersión natural (Bennett et. al. 1985, García Turudi et al. 1971, Starmer et al. 1987). En el año 1989 se encontró que la mariposa había llegado a Florida, EEUU (Habeck & Bennett 1989), y se espera que su dispersión continúe hasta llegar a México. Se sospecha que el arribo de Cactoblastis a EEUU, no fuera debido a dispersión natural, sino a una introducción accidental en cargamentos comerciales de Cactaceas desde las islas caribeñas (Pemberton 1995).
La llegada de Cactoblastis cactorum a Norte y Centro América tiene un potencial impacto adverso sobre las especies de Opuntia nativas, muchas de ellas en la lista de especies en peligro de extinción (Habeck & Bennett 1998).
Curiosamente, en Argentina se ha observado una significativa preferencia del Cactoblastis cactorum por Opuntia ficus-indica frente a otras Opuntias nativas, esto, sin dependencia de la densidad poblacional.
Probablemente la llegada de esta plaga a centro América, lugar de origen de Opuntia ficus-indica, implicaría no sólo graves daños a las poblaciones naturales y la consiguiente pérdida de diversidad, sino también un gran impacto en la economía de México, donde esta planta tiene mucha importancia.
Métodos de control
Independientemente del tipo de control que se utilice, es necesario aplicarlo durante varias generaciones del insecto. También es necesario un monitoreo de la infección a nivel regional.
Diferentes métodos de control
- Prevención.
- Control Orgánico. Control Manual. Control Biológico.
- Control Químico.
1. Prevención
Como medidas preventivas se sugiere evitar la excesiva densidad de plantas, eliminar las paletas caídas y quemar o enterrar profundamente los restos infectados de las podas.
2.Control Orgánico
Es importante considerar las ventajas de los productos orgánicos, principalmente visualizando las posibilidades de exportación. Por esto, es recomendable como estrategia a nivel regional, obtener experiencias de manejo de esta plaga sin el uso de ningún agroquímico.
2.1. Control manual del Cactoblastis en diferentes estadios:
- Huevos:
La cosecha de los huevos es uno de los métodos mas efectivos. Las oviposturas se colectan en bolsas que luego deben ser eliminadas. De esta forma la población disminuye notablemente.
- Larvas:
Cuando las larvas ingresan al interior del cladodio su control se hace muy dificultoso y se recomienda la eliminación del cladodio completo. Los síntomas de ataque son: manchas de color parduzco o secas, con perforaciones que exudan mucílago y manchas amarillentas en forma de galerías o redondeadas. Sin embargo cuando la eliminación del cladodio entero resulte muy traumática para la planta, la extracción con una navaja de las partes afectadas, cuidando de no dejar ninguna larva ni restos de su actividad en el interior de las paletas, puede ser suficiente.
- Adultos:
La polilla puede atacarse por medio del uso de trampas de luz o trampas con sustancias atractivas.
Trampas de luz
Además de su uso para el monitoreo de plagas resultan ser muy efectivas para controlar insectos voladores nocturnos. Las luces potentes son más efectivas aunque tanto focos eléctricos de 200W como lámparas de kerosén se utilizan con éxito. Existen diversos modelos de trampas de luz pero básicamente consisten en una fuente de luz debajo de la cual, a 5 cm, se coloca un recipiente chato con agua al que se le agregan 2 cucharadas de aceite quemado de motor. La luz atrae a las polillas que, volando cerca de la luz, caen al agua y el aceite se adhiere a sus alas, impidiendo su desplazamiento. Luces de diferente intensidad, atraen diferentes tipos y cantidades de insectos. El momento oportuno para colocar las trampas de luz depende del ciclo de vida de los insectos. El punto preciso es inmediatamente después de que las mariposas adultas hayan emergido, pero antes de la
ovipostura.
La distancia ideal entre cada trampa con 200W es de 100 m (cada una tiene un radio de acción de 50 metros). Deben ser colocadas en la periferia del cultivo.
Trampas con sustancias atractivas
Estas trampas son muy parecidas a las de luz pero la atracción de los insectos se debe a sustancias como extracto de malta (al 5%) y
euglenol. Se colocan 4-5 gotas de la sustancia sobre una almohadilla de algodón.
2.2. Métodos de control BIOLÓGICO:
Existe una serie de métodos que se utilizan convencionalmente para controlar larvas de Lepidópteros aunque aún no han sido probados para
Cactoblastis. Entre éstos están los repelentes y insecticidas orgánicos, introducción de aves de corral,
entomopatógenos, etc.. Los mas interesantes son:
Entomopatógenos:
Este control consiste en la cría de las larvas en condiciones de hacinamiento. Éstas se pueden obtener cosechándolas directamente desde paletas enfermas o por incubación de los huevos en cautiverio. La gran densidad de larvas induce la aparición de enfermedades que producirán la rápida muerte de la totalidad de ellas. Con este material contaminado se prepara una dilución que se utiliza para pulverizar los cultivos. Las larvas muertas y colocadas en frascos limpios se conservan a –3° C durante año y medio aproximadamente manteniendo su poder contaminante. Entre los patógenos comúnmente usados para controlar Lepidópteros se encuentran Bacillus
thuringiensis, Virus granulosis y Virus poliedrosis.
Microhimenópteros:
Este método de control es utilizado con éxito para otros cultivos y consiste en la utilización de avispas que parasitan los huevos de la plaga.
El control con microhimenópteros parásitos de huevos no autóctonos, como son algunas especies de Trichogramma comúnmente usadas con este fin, podría tener un impacto adverso sobre otros Lepidópteros deseables
(Habeck & Bennett 1998). Se han observado en Córdoba huevos de Cactoblastis parasitados por un microhimenóptero del género Trichogramma aunque, al no tener éxito en su reproducción en cautiverio sobre huevos de Sitotroga cerealela no sería una especie conocida
(Scheibengraf 1993).
Además, en Argentina esta polilla tiene otros enemigos naturales conocidos como: Apanteles alexanderi Brethes
(Braconidae), Phyticiplex doddi Cushman y P. eremnus Porter (Ichneumonidae), Brachymeria cactoblastidis Blanchard
(Chalcididae), y Epicoronimyia mundelli Blanchard (Tachinidae; Habeck & Bennett 1998). El rango de huéspedes de estos enemigos naturales debería determinarse para evaluar sus posibles usos como control biológico de Cactoblastis
cactorum, en otros países (Habeck & Bennett 1998).
3. Control Químico
Si bien hay métodos de control químico para Cactoblastis cactorum, no se conoce ninguno que actúe satisfactoriamente
(Habeck & Bennett 1998).
La pulverización con insecticidas debe hacerse cuando la mayor parte de la población se encuentre en estado de huevo. La aplicación debe hacerse hasta punto de goteo para que todos los huevos entren en contacto con el spray. La pulverización tiene que ser en gota gruesa con una mochila provista de boquilla adecuada 52 y disco D5.
Entre los insecticidas utilizados con éxito podemos mencionar:
- Carbaril polvo mojable al 85%. Se diluyen 35 gr en 20 lts de agua (comercialmente conocidos como DICARBAM, SEVIN, CARBASPRAY, CAPEX 7, etc).
- Methidathion al 40 %. Diluido 9 gr en 18 lts de agua. Muy tóxico (Grupo1).
- Cipermetrina diluida 17 mm en 100 lts de agua más humectante.
Importante: Algunos insecticidas como el Parathion y el Dimetoato han mostrado fitotoxicidad con las Cactáceas.
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Una experiencia de control de cactoblastis en
Córdoba
Fuente: Ivano Bonamici